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MS GAS-100氣體分析質(zhì)譜儀用于對氣體和揮發(fā)物質(zhì)，包括同位素、溶劑和可揮發(fā)有機物進行復雜的精確分析。

系統(tǒng)組成：

• 質(zhì)譜分析模塊：由開放/封閉版電子碰撞離子源，兩個獨立燈絲和一個四級質(zhì)樸分析器組成。質(zhì)量范圍分為1-100、1-200和1-300 amu。系統(tǒng)中應用兩種檢測器：

  法拉第檢測器：靈敏度低于10ppm

  次級電子倍增檢測器（SEM）：靈敏度低于100ppb

• 高效真空泵系統(tǒng)：真空室內(nèi)置加熱元件；汽水分離模塊；雙泵抽真空模塊，包括前級隔膜泵和渦輪分子泵。恒溫加熱元件可以去除真空室中的雜質(zhì)。汽水分離模塊中的電子控制斯特林制冷器可以高效抑制水分子背景，從而顯著提高離子源壽命。這一模塊可以連續(xù)運行數(shù)周。溫度可以由用戶自定義，從而監(jiān)測特定的揮發(fā)物質(zhì)，如乙醇等。

• 進樣單元：模塊化設計，可互換滲透膜探頭或針閥進樣器。滲透膜探頭允許溶解物質(zhì)通過，既可以測量液態(tài)樣品，也可以測量環(huán)境氣體。針閥進樣器適用于直接測量氣態(tài)樣品中的揮發(fā)物質(zhì)。

• 真空壓傳感器：測量真空室中的總壓力和進樣單元中的壓力，確保不會損壞質(zhì)譜分析器。

• 集成觸屏監(jiān)控器：可手動控制加熱/制冷溫度，開閉進樣器、分流閥和安全閥?？赏ㄟ^預設程序進行自動測量。

• 控制軟件：操作設定質(zhì)譜儀、獲取測量數(shù)據(jù)、編寫用戶自定義測量程序用于測量特定的物質(zhì)。

應用領域：

•  氣體和液體樣品的氣體交換，如藻類光合作用（CO₂、O₂）、生物燃料研究（H₂、乙醇、烴類）

• 一臺儀器即可進行多種氣體和揮發(fā)物質(zhì)的長期監(jiān)測

• 兩種進樣單元，即可測量氣體也可測量液體

• 模塊進樣設計，多種接口可選，可以進行整株植物或細胞懸液的氣體交換分析

• 固氮生物研究（N₂）

• 18O₂標記光呼吸研究

• 同位素分布分析

• 氣體污染研究（CH₄，H₂S，NOx，SO₂，CS₂，CO等）

• 水污染研究（可溶性有害氣體、揮發(fā)性有機物等）

技術(shù)參數(shù)：

• 分析氣體種類：氣體：CO₂、O₂、H₂、N₂、C₂H₄、CH₄、H₂S、NOx、SO₂、CS₂、CO等

  揮發(fā)性有機物：乙醇、烴類、苯、甲苯、丙酮等

•  質(zhì)譜分析器：殘余氣體分析器（RGA）

• 質(zhì)量范圍：1-100 amu、1-200 amu、1-300 amu

• 離子源：開放或封閉版電子碰撞離子源，兩個獨立燈絲（燈絲材料：yttriated iridium）

• 檢測器：

  法拉第檢測器：靈敏度<10ppm

  次級電子倍增檢測器（SEM）：靈敏度<100ppb

• 響應時間：<20秒

• 真空系統(tǒng)：前級隔膜泵和渦輪分子泵

• 進樣器：滲透膜探頭（PDMS）或針閥進樣器

• 加熱系統(tǒng)：100W恒溫加熱元件，zui高溫度90℃

• 制冷系統(tǒng)：電子控制內(nèi)置斯特林制冷汽水分離模塊，zui低溫度-80

• 壓力傳感器：高真空壓傳感器用于測量真空室中總壓力；進樣器壓力傳感器用于保護質(zhì)譜分析器

• 觸控屏：系統(tǒng)控制并顯示實際讀數(shù)

• BIOS：可升級固件

• 通訊端口：千兆以太網(wǎng)，TCP/IP協(xié)議

• 外部工作站：預裝軟件，操作設定質(zhì)譜儀、獲取測量數(shù)據(jù)、編寫用戶自定義測量程序用于測量特定的物質(zhì)

• 尺寸：54.5×72×45.5cm

• 重量：65kg

• 供電：110-230V交流電

   

應用案例：

配合FMT150藻類培養(yǎng)與在線監(jiān)測系統(tǒng)測量藍藻Synechocystis 6803光補償點（測量O₂）。

配合測量室和FluorCam便攜式葉綠素熒光成像系統(tǒng)，測量整株番茄的光合作用（測量CO₂），同時與Li6400測量數(shù)據(jù)進行對比，可見MS GAS-100的穩(wěn)定性和重復性要遠遠高于Li6400。

產(chǎn)地：歐洲

 參考文獻：

1. Zav?el T. et al, 2016, A quantitative evaluation of ethylene production in the recombinant cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803 harboring the ethylene-forming enzyme by membrane inlet mass spectrometry. Bioresource Technology, 202:142-151
2. Zav?el T., ?ervený J., Knoop H., Steuer R., 2016, Optimizing cyanobacterial product synthesis: Meeting the challenges. Bioengineered, 7(6): 490-496.